Процедура биотестирования

Приготовьте стаканы с объемом 150-200 мл для контрольной воды (повторность каждого опыта трехкратная).Стаканы прономируйте.

Налейте в три стакана по 100 мл контрольной воды (в качестве контрольной используется культивационная вода).

Приготовьте серию разбавлений анализируемых проб. Для приготовления разбавлений исследуемых вод используйте культивационную воду. Рекомендуемый для разбавлений исследуемых вод используйте культивационную воду. Рекомендуемый для разбавлений коэффициент 0,3. В этом случае будут анализироваться 100, 30, 9, 3 и 1 % концетрации. При заведомо ожидаемой высокой токсичности исследуемые воды анализируются в 10, 3, 1, 0.3 и 0.1 % концетрациях. Возможен произвольный выбор разведений. Чем выше предполагаемая токсичность, тем большей должна быть кратность разбавлений исходной воды.

Налейте в приготовленные стаканы по 100 мл тестируемой воды и ее разбавлений. Повторность каждого опыта трехкратная.

Посадите по 10 мотылей синхронизированной культуры в сосуды с приготовленными разбавлениями и контрольную воду. Посадку мотылей начните с контрольной воды. В исследуемые растворы мотылей помещайте, начиная со стаканов с большим разбавлением к меньшему разбавлению.

Через 15 минут после посадки проведите учет выживших мотылей.

Особей считают выжившими, если они свободно передвигаются в толще воды или всплывают со дна сосуда не позднее 15 секунд после легкого покачивания.

Если в любой учитываемый период времени в сточной воде погибает 50 и более процентов мотылей, биотестирование прекращают.

Если гибель мотылей в контроле превысила 10%, то результаты опыта не учитываются, опыт должен быть повторен.